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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Diversidad de adenovirus detectados en niños menores de 5 años hospitalizados por infección respiratoria aguda baja en Paraguay, 2010-2013]]></article-title>
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<institution><![CDATA[,Departamento de Biología Molecular y Biotecnología, Instituto de Investigación en Ciencias de la Salud, Universidad Nacional de Asunción. San Lorenzo, Paraguay.  ]]></institution>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Adenoviruses cause a variety of diseases that range from mild to fatal in vulnerable patients. Its evolution occurs as a process of selection pressure; for example, genetic recombination generates intermediate strains that can be more infectious or pathogenic than parental strains. This study sought to determine the diversity of circulating adenoviruses in Paraguayan children less than 5 years of age hospitalized with acute lower respiratory infection, by using molecular biology and bioinformatics tools, though amplification of penton, hexon and fiber genes in 26 samples of nasopharyngeal aspirates. It was demonstrated the circulation of three species: B (4/26), C (21/26), and D (1/26), as well as recombination events corresponding to the HAdV-D isolate, with at least three different genotypes (D49, D9 y D15). The HAdV-D are associated with gastrointestinal or ocular diseases, and less commonly with respiratory infections. Recently, however, it has been reported changes in behavior of these viruses due to recombination, allowing them to expand their host cell repertoire. These data extend the knowledge about the genetic diversity of HAdV in Paraguay and strongly support the importance of genomic analysis using bioinformatics tools in epidemiological surveillance of emerging recombinant strains of HAdV.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[Infección respiratoria aguda baja]]></kwd>
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<kwd lng="es"><![CDATA[secuenciación ADN]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[ <p align="right"><font size="3" face="Verdana"><b>ART&Iacute;CULO ORIGINAL</b></font></p>     <p align="left">&nbsp;</p>     <p align="left"><font size="4" face="Verdana"><b>Diversidad de adenovirus detectados en ni&ntilde;os menores  de 5 a&ntilde;os hospitalizados por infecci&oacute;n respiratoria aguda baja en Paraguay,  2010-2013</b></font></p>        <p align="left"><font size="3" face="Verdana"><b><i>Diversity of adenoviruses detected in children less than 5 years of age  hospitalized with lower acute respiratory infection in Paraguay, 2010-2013</i></b></font></p>       <p align="center">&nbsp;</p>     <p align="left"><font size="2" face="Verdana"><b>Julio C. Barrios<sup>(1)</sup>, Graciela Russomando<sup>(1)</sup>,  Emilio E. Esp&iacute;nola<sup>(1)</sup></b></font></p>       <p align="left"> <font size="2" face="Verdana"><sup>1</sup> Departamento  de Biolog&iacute;a Molecular y Biotecnolog&iacute;a, Instituto de Investigaci&oacute;n en Ciencias  de la Salud, Universidad Nacional de Asunci&oacute;n. San Lorenzo, Paraguay.</font></p>       <p align="left"> <font size="2" face="Verdana"><b>Correspondencia</b>: Emilio E. Esp&iacute;nola. Campus Universitario de la UNA; Dr.  Cecilio B&aacute;ez casi Dr. Gaspar Villamayor, CP 2160, San Lorenzo, Paraguay.  E-mail: <a href="mailto:emilioespinola@hotmail.com">emilioespinola@hotmail.com</a></a></font></p>       <p align="left"> <font size="2" face="Verdana">Conflicto de intereses: Los autores declaran no poseer  conflicto de intereses.</font></p>       <p align="left"> <font size="2" face="Verdana">Recibido: 16/06/2016; Aceptado:  18/07/2016.</font></p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="left">&nbsp;</p> <hr size="1" noshade>     <p align="left"><font size="2" face="Verdana"><b>RESUMEN</b></font></p>      <p align="left"><font size="2" face="Verdana">Los adenovirus humanos (HAdV) causan una diversidad de  patolog&iacute;as que pueden ser leves o incluso mortales en pacientes vulnerables. Su  evoluci&oacute;n ocurre conforme act&uacute;a una presi&oacute;n de selecci&oacute;n; por ejemplo, la recombinaci&oacute;n  gen&eacute;tica genera cepas h&iacute;bridas que pueden ser m&aacute;s infectivas o m&aacute;s patog&eacute;nicas  que las parentales. Este estudio busc&oacute; determinar la diversidad de HAdV  circulantes en ni&ntilde;os paraguayos menores de 5 a&ntilde;os hospitalizados por infecci&oacute;n  respiratoria aguda baja, mediante el uso de herramientas de biolog&iacute;a molecular  y bioinform&aacute;tica, para lo cual fueron amplificados los genes hexon, penton y  fibra en 26 muestras de aspirados nasofar&iacute;ngeos. Se demostr&oacute; la circulaci&oacute;n de  tres especies: B (4/26), C (21/26), y D (1/26), as&iacute; como tambi&eacute;n eventos de  recombinaci&oacute;n en el aislado correspondiente a HAdV-D, al menos con tres genotipos  distintos (D49, D9 y D15). Los HAdV-D est&aacute;n asociados a enfermedades gastrointestinales,  oculares y, menos com&uacute;nmente a infecciones respiratorias. Sin embargo,  recientemente se han reportado cambios en el comportamiento de estos virus debido  a recombinaci&oacute;n, lo que les permite expandir su repertorio de c&eacute;lulas hu&eacute;sped. Estos  datos ampl&iacute;an los conocimientos acerca de la diversidad gen&eacute;tica de HAdV en el  Paraguay y apoyan fuertemente la importancia de los an&aacute;lisis gen&oacute;micos mediante  herramientas bioinform&aacute;ticas en la vigilancia epidemiol&oacute;gica de las cepas  recombinantes emergentes de HAdV.</font></p>        <p align="left"><font size="2" face="Verdana"><b>Palabras clave</b>: Infecci&oacute;n respiratoria aguda baja, adenovirus, secuenciaci&oacute;n ADN,  an&aacute;lisis bioinform&aacute;tico, recombinaci&oacute;n.</font></p>      <p align="left">&nbsp;</p>     <p align="left"><font size="2" face="Verdana"><b>ABSTRACT</b></font></p>     <p align="left"><font size="2" face="Verdana">Adenoviruses cause a variety of diseases that range  from mild to fatal in vulnerable patients. Its evolution occurs as a process of  selection pressure; for example, genetic recombination generates intermediate  strains that can be more infectious or pathogenic than parental strains. This  study sought to determine the diversity of circulating adenoviruses in  Paraguayan children less than 5 years of age hospitalized with acute lower  respiratory infection, by using molecular biology and bioinformatics tools,  though amplification of penton, hexon and fiber genes in 26 samples of  nasopharyngeal aspirates. It was demonstrated the circulation of three species:  B (4/26), C (21/26), and D (1/26), as well as recombination events  corresponding to the HAdV-D isolate, with at least three different genotypes </a>(D49, D9 y D15). The HAdV-D are  associated with gastrointestinal or ocular diseases, and less commonly with  respiratory infections. Recently, however, it has been reported changes in  behavior of these viruses due to recombination, allowing them to expand their host  cell repertoire. These data extend the knowledge about the genetic diversity of  HAdV in Paraguay and strongly support the importance of genomic analysis using  bioinformatics tools in epidemiological surveillance of emerging recombinant  strains of HAdV.</font></p>        <p align="left"><font size="2" face="Verdana"><b>Keywords</b>: Acute lower  respiratory tract infection, adenovirus, DNA sequencing, bioinformatic  analyses, recombination.</font></p>    <hr size="1" noshade>     <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="left"><font size="3" face="Verdana"><b>INTRODUCCI&Oacute;N</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="left"><font size="2" face="Verdana">Los adenovirus humanos (HAdV) pertenecen a la familia <i>Adenoviridae</i>, y poseen un genoma de DNA  lineal de 34 a 36 kbp (1,2). Son una causa principal de infecciones  respiratorias agudas bajas, principalmente en ni&ntilde;os. Adem&aacute;s, pueden comprometer  los sistemas gastrointestinal, ocular, renal, entre otros, con billones de  personas infectadas a nivel mundial(3). Comprenden 65 genotipos  (HAdV-1 a HAdV-65) (4,5), de los cuales los primeros 51 tipos fueron  caracterizados en base al tipo espec&iacute;fico de neutralizaci&oacute;n mediada por  antisuero(6,7) y los dem&aacute;s fueron designados por an&aacute;lisis bioinform&aacute;tico  de secuencias(4). Los genotipos se agrupan en siete especies,  denominadas HAdV-A a HAdV-G(8).</font></p>      <p align="left"><font size="2" face="Verdana">Los HAdV son virus no  envueltos que presentan una c&aacute;pside icosa&eacute;drica, con fibras que sobresalen de  los v&eacute;rtices. La c&aacute;pside rodea y protege el genoma del virus (1,2).  Est&aacute; constituida por 240 caps&oacute;meros de la prote&iacute;na hexon, que forma la mayor  parte de la superficie de la c&aacute;pside, y contiene dos bucles hiper variables  (bucle 1 y bucle 2) donde se encuentra el determinante antig&eacute;nico &#400; contra la  cual reaccionan los anticuerpos en una reacci&oacute;n de neutralizaci&oacute;n (9).  La c&aacute;pside tambi&eacute;n posee 12 caps&oacute;meros de la prote&iacute;na penton, uno en cada  v&eacute;rtice (10); esta prote&iacute;na tiene un motivo conservado de  Arginina-Glicina-&Aacute;cido asp&aacute;rtico (RGD) que interact&uacute;a con las integrinas  celulares y es importante en la internalizaci&oacute;n del virus en la c&eacute;lula hu&eacute;sped (11).  A partir de cada penton sobresalen unas prolongaciones proteicas denominadas  fibra, que se componen de tres dominios: un dominio N-terminal (<i>tail</i>) que se une a la base penton, un  eje central (<i>shaft</i>) que presenta  flexibilidad durante la infecci&oacute;n y una porci&oacute;n C-terminal globular (<i>knob</i>) que se une al receptor primario en  c&eacute;lulas hu&eacute;sped (12).</font></p>      <p align="left"><font size="2" face="Verdana">Entre los principales mecanismos de evoluci&oacute;n  descriptos para HAdV se encuentran las mutaciones puntuales y eventos de  recombinaci&oacute;n gen&eacute;tica intra- o inter-especies (13). Estas &uacute;ltimas  se desarrollan cuando dos o m&aacute;s genotipos diferentes de HAdV infectan a una  misma c&eacute;lula y, eventualmente, la DNA polimerasa que realiza la replicaci&oacute;n del  HAdV donador pasa a replicar al HAdV aceptor, generando un genoma recombinante.  Se ha reportado que los genes hipervariables hexon, penton y fibra son sitios  altamente susceptibles a eventos de recombinaci&oacute;n, ya sea en regiones  intrag&eacute;nicas, o en sus zonas flanqueantes(14). No se conoce el  mecanismo exacto de recombinaci&oacute;n, sin embargo, algunos autores sugieren que la recombinaci&oacute;n puede ser consecuencia de la  presi&oacute;n selectiva del sistema  inmune del hu&eacute;sped sobre la superficie proteica  de la c&aacute;pside viral, o un motivo de  nucle&oacute;tidos que dirige la maquinaria  de recombinaci&oacute;n celular hacia sitios  espec&iacute;ficos del ADN viral; o una combinaci&oacute;n de ambas (15).</font></p>      <p align="left"><font size="2" face="Verdana">En Paraguay, uno  de los pocos trabajos de detecci&oacute;n de variabilidad gen&eacute;tica de HAdV fue publicado  en el a&ntilde;o 2012, en el cual se analizaron muestras de aspirados nasofar&iacute;ngeos (ANFs)  de ni&ntilde;os menores de 5 a&ntilde;os hospitalizados por IRAb, detect&aacute;ndose la circulaci&oacute;n  de las especies: B (HAdV-16), C (HAdV-1, HAdV-2, HAdV-5, HAdV-6) y D (HAdV-15);  los genotipos fueron designados en base al an&aacute;lisis filogen&eacute;tico de la regi&oacute;n  C4 del gen hexon (16).</font></p>      <p align="left"><font size="2" face="Verdana">En el presente trabajo se analiz&oacute; la variabilidad de  los 3 genes reportados como sitios probables de recombinaci&oacute;n, es decir, el hexon,  penton y fibra, utilizando como punto de partida las muestras paraguayas analizadas  anteriormente s&oacute;lo para el gen hexon (16), adicionando muestras  colectadas durante el desarrollo de este trabajo y realizando un an&aacute;lisis bioinform&aacute;tico  m&aacute;s profundo con el fin de detectar nuevos genotipos y posibles recombinantes inter-g&eacute;nicos  de HAdV.</font></p>          <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="left"><font size="3" face="Verdana"><b>METODOLOG&Iacute;A</b></font></p>       <p align="left"><font size="2" face="Verdana"><b>Muestras  y extracci&oacute;n de DNA viral</b></font></p>      <p align="left"><font size="2" face="Verdana">Se analizaron 26 muestras de ANFs de ni&ntilde;os menores de 5 a&ntilde;os,  hospitalizados con diagn&oacute;stico de IRAb en el Hospital General Pedi&aacute;trico Ni&ntilde;os  de Acosta &Ntilde;u (San Lorenzo &ndash; Departamento Central, Paraguay), 2010-2013, en los  cuales fueron detectados previamente HAdV por la t&eacute;cnica de PCR en tiempo real.  El DNA viral se extrajo a partir de 200 &micro;L de ANF, utilizando el <i>AxyPrep</i> <i>Body</i> <i>Fluid</i> <i>Viral</i> <i>DNA</i>/<i>RNA</i> <i>Miniprep</i> <i>Kit</i> (Axygen Biosciences, USA), y se eluy&oacute; en 60 &micro;L de agua.</font></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="left"><font size="2" face="Verdana"><b>PCR convencional</b></font></p>      <p align="left"><font size="2" face="Verdana">Se amplificaron las regiones gen&oacute;micas correspondientes a los genes hexon,  penton y fibra. Se emplearon cebadores ya publicados para amplificar los genes hexon  (17) y penton (18). Sin embargo, fue necesario el dise&ntilde;o  de nuevos cebadores para el gen fibra de cada especie de HAdV, debido a la  dificultad de amplificar este gen en muestras cl&iacute;nicas con los  cebadores disponibles. En cuanto al  gen hexon, se  amplific&oacute; la regi&oacute;n C4, empleando dos pares de cebadores (17), que  amplifican de forma gen&eacute;rica todas las especies de HAdV sin distinci&oacute;n de  genotipos.</a> En cuanto al gen penton, se amplific&oacute; la regi&oacute;n que contiene el motivo RGD,  utilizando tres pares de cebadores (18), un par para cada especie  (B, C y D). En cuanto al gen fibra, se amplific&oacute; un fragmento que inclu&iacute;a las  regiones <i>shaft/knob</i> (en cuyos l&iacute;mites  se han reportado eventos de recombinaci&oacute;n); se dise&ntilde;aron los cebadores <i>forward</i> para las especies B y D, y se  emparejaron con cebadores descritos previamente (9). Para la especie  C, se dise&ntilde;aron tres cebadores genotipo espec&iacute;ficos: un cebador <i>forward</i> (FiADV56-F) para los genotipos  1, 2, 5 y 6; un cebador <i>reverse</i> (FiADV12-R)  para los genotipos 1 y 2 y otro <i>reverse </i>(FiADV56-R)  para los genotipos 5 y 6. Las mezclas de reacci&oacute;n de PCR, condiciones de  termociclado y electroforesis de los amplicones obtenidos, se realizaron seg&uacute;n  reportes publicados en esta secci&oacute;n.</font></p>      <p align="left"><font size="2" face="Verdana"><b>Secuenciaci&oacute;n,  anotaciones y alineamientos m&uacute;ltiples de secuencias</b></font></p>      <p align="left"><font size="2" face="Verdana">La secuenciaci&oacute;n directa se realiz&oacute; en la empresa Macrogen Inc.  (Corea), por el m&eacute;todo de Sanger. Para la edici&oacute;n manual y anotaciones de secuencias,  se utiliz&oacute; el programa <i>BioEdit</i> 7.2.5 (19).  Con cada anotaci&oacute;n hecha se formaron tres matrices nucleot&iacute;dicas distintas, una  para cada gen. Estas matrices fueron sometidas a alineamientos m&uacute;ltiples  utilizando Clustal W (20).</font></p>      <p align="left"><font size="2" face="Verdana"><b>Construcci&oacute;n  del &aacute;rbol filogen&eacute;tico para los  genes hexon, penton y fibra</b></font></p>      <p align="left"><font size="2" face="Verdana">Se realiz&oacute;  para los genes penton, hexon y fibra por separado para evaluar la coherencia de  genotipos en cada cepa y detectar posibles recombinantes inter-g&eacute;nicos,  utilizando el m&eacute;todo de <i>neighbor</i>-<i>joining</i>, y K2P como modelo de  sustituci&oacute;n nucleot&iacute;dica, con valor de <i>bootstrap</i> de 1000 r&eacute;plicas, utilizando el paquete de programas MEGA 5 (21). Los  genotipos fueron asignados seg&uacute;n su agrupamiento con secuencias de referencia extra&iacute;das  de la base de datos <i>GenBank</i>.</font></p>      <p align="left"><font size="2" face="Verdana"><b>An&aacute;lisis  de recombinaci&oacute;n</b></font></p>      <p align="left"><font size="2" face="Verdana">Se  utiliz&oacute; el programa <i>Simplot</i> v 3.5.1 (22),  utilizando un ancho de ventana (<i>window</i> <i>size</i>) de 200 nucle&oacute;tidos y una longitud  de movimiento de la ventana (<i>step size</i>)  de 20 nucle&oacute;tidos. </font></p>      <p align="left"><font size="2" face="Verdana"><b>Aislamiento  de virus en cultivo celular</b></font></p>      <p align="left"><font size="2" face="Verdana">Se procedi&oacute; al aislamiento de HAdV en cultivo  celular, utilizando la l&iacute;nea celular A549. Las muestras  analizadas fueron seleccionadas por su naturaleza recombinante, y aquellas cuyos  vol&uacute;menes fueron agot&aacute;ndose a medida que se estandarizaban la PCRs, para  proseguir con los an&aacute;lisis.</font></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="left"><font size="2" face="Verdana"><b>Notaci&oacute;n</b></font></p>      <p align="left"><font size="2" face="Verdana">Los genotipos resultantes fueron expresados utilizando  letras may&uacute;sculas para indicar el gen, seguido del genotipo asignado, como  sigue: &ldquo;P&rdquo; para penton, &ldquo;H&rdquo; para hexon y &ldquo;F&rdquo; para fibra. As&iacute; P1H1F1 representa un  virus &ldquo;no recombinante&rdquo; de genotipo 1 en los tres genes analizados. En caso de  no determinarse el genotipo para un gen, se utiliz&oacute; un s&iacute;mbolo de interrogaci&oacute;n  (ej: P?H1F1).</font></p>      <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="left"><font size="3" face="Verdana"><b>RESULTADOS</b></font></p>       <p align="left"><font size="2" face="Verdana"><b>Genes  amplificados mediante PCR convencional</b></font></p>       <p align="left"><font size="2" face="Verdana">De las 26 muestras cl&iacute;nicas positivas para HAdV,  se logr&oacute; amplificar los tres genes en diferente n&uacute;mero de muestras: hexon  (n=26), penton (n=22), y fibra (n=15) (<a href="#2a03t1">Tabla 1</a>).</font></p>        <p align="center"><a name="2a03t1"></a></p>     <p align="left">&nbsp;</p>     <p align="center"><img src="../../../../../img/revistas/ped/v43n2/2a03t1.jpg"></p>         <p align="left"><font size="2" face="Verdana">La no amplificaci&oacute;n de algunos genes penton y fibra se debi&oacute; a la escasez  de muestra cl&iacute;nica (o crecimiento infructuoso en cultivo celular), o problemas  de anillamiento de los cebadores disponibles. Cabe destacar que la  amplificaci&oacute;n de todos los genes hexon, en primer lugar, permiti&oacute; la agrupaci&oacute;n  de las muestras por especies y la aplicaci&oacute;n de cebadores  especie-genotipo-espec&iacute;ficos para los dem&aacute;s genes.</font></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="left"><font size="2" face="Verdana"><b>Filogenia  del gen penton - Especie B</b></font></p>      <p align="left"><font size="2" face="Verdana">Para la especie B, la matriz  se compuso de 3 secuencias en estudio y 57 secuencias de referencia (genotipos  1 al 57). Una se agrup&oacute; con HAdV-B16, y dos se asociaron con HAdV-B3 (<a href="#2a03f1">Figura 1A</a>).</font></p>         <p align="center"><a name="2a03f1"></a></p>     <p align="left">&nbsp;</p>     <p align="center"><img src="../../../../../img/revistas/ped/v43n2/2a03f1.jpg"></p>         <p align="left"><font size="2" face="Verdana">Para la especie C, la matriz  se compuso de 18 secuencias en estudio y 57 secuencias de referencia. De las  18, cinco se agruparon con HAdV-C1, tres se agruparon con HAdV-C2, una con  HAdV-C6, seis ocuparon una posici&oacute;n intermedia entre los genotipos de  referencia HAdV-C1 y HAdV-C6, y tres ocuparon una posici&oacute;n intermedia entre los  genotipos HAdV-C5 y HAdV-C6 (Figura 1B).</font></p>       <p align="left"><font size="2" face="Verdana">Para la especie D, la matriz  se conform&oacute; con una secuencia en estudio y 57 secuencias de referencia. Py52A  se agrup&oacute; con HAdV-D49 (Figura 1C).</font></p>       <p align="left"><font size="2" face="Verdana"><b>Filogenia del gen hexon</b></font></p>      <p align="left"><font size="2" face="Verdana">Para la especie B, se  obtuvieron 4 secuencias: tres de ellas se asociaron con HAdV-B3, y una se  asoci&oacute; previamente con HAdV-B16 (16) (<a href="#2a03f2">Figura 2</a>).</font></p>       <p align="center"><a name="2a03f2"></a></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="left">&nbsp;</p>     <p align="center"><img src="../../../../../img/revistas/ped/v43n2/2a03f2.jpg"></p>        <p align="left"><font size="2" face="Verdana">Para la especie C, se  obtuvieron 21 secuencias: cinco de ellas se agruparon con HAdV-C1, cuatro con  HAdV-C2, seis con HAdV-C5 y otras seis con HAdV-C6. De todas ellas, las  marcadas con puntos rojos fueron nuevas determinaciones (17 secuencias) y las  marcadas con puntos negros, ya fueron reportadas previamente (16) (Figura 2).</font></p>      <p align="left"><font size="2" face="Verdana">Una sola secuencia en  estudio (Py52A) fue agrupada dentro de la especie D; esta secuencia fue  previamente reportada como HAdV-D15 (16) (Figura 2).</font></p>      <p align="left"><font size="2" face="Verdana"><b>Filogenia del gen fibra</b></font></p>      <p align="left"><font size="2" face="Verdana">Para la filogenia del gen fibra, se crearon dos  matrices debido a diferencias en longitudes de nucle&oacute;tidos secuenciados para la  especie B con respecto a las especies C y D. Para la especie B, la matriz se  conform&oacute; con una secuencia en estudio (Py50A) y 57 secuencias de referencia del  mismo gen. Py50A &nbsp;se asoci&oacute; con a  HAdV-B16 (<a href="#2a03f3">Figura 3A</a>).</font></p>       <p align="center"><a name="2a03f3"></a></p>     <p align="left">&nbsp;</p>     <p align="center"><img src="../../../../../img/revistas/ped/v43n2/2a03f3.jpg"></p>        <p align="left"><font size="2" face="Verdana">En cuanto a las especies C y  D, la matriz incluy&oacute; 14 secuencias en estudio y 57 secuencias de referencia. Cinco  se agruparon con HAdV-C1, cuatro con HAdV-C2, tres con HAdV-C5, y una con  HAdV-C6. Py52A (&uacute;nico representante de la especie D), se agrup&oacute; con HAdV-D15 (Figura 3).</font></p>       ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="left"><font size="2" face="Verdana"><b>Genotipos asignados a las  muestras en estudio</b></font></p>      <p align="left"><font size="2" face="Verdana">Una vez asignados los genotipos, <a href="#2a03t2">Tabla 2</a>, se observaron muestras cuyos genes pertenec&iacute;an al mismo genotipo  (es decir, probables no-recombinantes) y muestras con genotipos discordantes en  uno o m&aacute;s genes (lo que indicar&iacute;a la posible existencia de eventos de  recombinaci&oacute;n inter-g&eacute;nica en estas muestras). Por ejemplo, un probable  no-recombinante ser&iacute;a la muestra N&deg; 1 (Py02A), de genotipo 1 en los tres genes  estudiados (P1H1F1); por otro lado, un ejemplo de probable recombinante  inter-g&eacute;nico ser&iacute;a la muestra N&deg; 7 (Py52A), con al menos dos genotipos  diferentes (P49H15F15).</font></p>        <p align="center"><a name="2a03t2"></a></p>     <p align="left">&nbsp;</p>     <p align="center"><img src="../../../../../img/revistas/ped/v43n2/2a03t2.jpg"></p>       <p align="left"><font size="2" face="Verdana"><b>An&aacute;lisis  de recombinaci&oacute;n</b></font></p>      <p align="left"><font size="2" face="Verdana">No se detect&oacute; evidencia contundente de recombinaci&oacute;n  intra-g&eacute;nicas en las regiones parciales de los genes analizados (datos no  mostrados). Debido a estos resultados, se decidi&oacute; extender el estudio con una  de las muestras m&aacute;s representativas de este trabajo: Py52A (probable  recombinante inter-g&eacute;nico, tipificado como P49H15F15) perteneciente a la  especie D, cuyos miembros son poco frecuentes en infecciones respiratorias.</font></p>      <p align="left"><font size="2" face="Verdana"><b>An&aacute;lisis  de recombinaci&oacute;n para la  especie D</b></font></p>      <p align="left"><font size="2" face="Verdana">En un intento de aclarar la inconsistencia genot&iacute;pica observada  anteriormente con la muestra Py52A, se aisl&oacute; el virus a partir de cultivo  celular, y fueron dise&ntilde;ados nuevos cebadores para amplificar una regi&oacute;n de 1572-nt  del gen hexon incluyendo parte del bucle 1, que contiene 6 regiones hiper  variables (HVR1-6), y el bucle 2, que contiene la HVR-7, donde com&uacute;nmente son  reportados eventos de recombinaci&oacute;n intra-g&eacute;nica (23). Este fragmento de 1572-nt fue  empalmado a la regi&oacute;n C4 anteriormente obtenida, resultando en un fragmento  final de 2370-nt (renombrado Py52A-HexCult). El an&aacute;lisis filogen&eacute;tico de esta regi&oacute;n mostr&oacute; la asociaci&oacute;n  de Py52A-HexCult con HAdV-9 (<a href="#2a03f4">Figura 4</a>).</font></p>       <p align="center"><a name="2a03f4"></a></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="left">&nbsp;</p>     <p align="center"><img src="../../../../../img/revistas/ped/v43n2/2a03f4.jpg"></p>       <p align="left"><font size="2" face="Verdana">Debido a que esta asociaci&oacute;n con HAdV-9 fue inesperada, la &nbsp;matriz  fue sometida a an&aacute;lisis de recombinaci&oacute;n. El an&aacute;lisis <i>Simplot</i> demostr&oacute; que los bucles 1 y 2 del gen hexon presentaban m&aacute;s  del 95% de similitud con HAdV-9, mientras que la regi&oacute;n C4 del gen hexon present&oacute;  m&aacute;s del 98% de similitud con HAdV-15, sugiriendo un evento de recombinaci&oacute;n  entre &eacute;stos dos prototipos (<a href="#2a03f5">Figura 5</a>).</font></p>      <p align="center"><a name="2a03f5"></a></p>     <p align="left">&nbsp;</p>     <p align="center"><img src="../../../../../img/revistas/ped/v43n2/2a03f5.jpg"></p>        <p align="left"><font size="2" face="Verdana">Para encontrar el punto  exacto de quiebre o recombinaci&oacute;n se realiz&oacute; un an&aacute;lisis <i>bootscan</i> (valores por defecto, datos no mostrados), mediante el  cual se detect&oacute; un evento de recombinaci&oacute;n al final del bucle 2 e inicio de la  regi&oacute;n C4, en la posici&oacute;n nucleot&iacute;dica 1100, aproximadamente.</font></p>         <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="left"><font size="3" face="Verdana"><b>DISCUSI&Oacute;N</b></font></p>      <p align="left"><font size="2" face="Verdana">En este estudio se analizaron 26 muestras de ANFs  positivas para HAdV, provenientes de pacientes menores de 5 a&ntilde;os hospitalizados  por IRAb, con la finalidad de determinar la diversidad gen&eacute;tica de estos virus  en Paraguay y la presencia de eventos de recombinaci&oacute;n.</font></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="left"><font size="2" face="Verdana">Las especies de HAdV &nbsp;estudiadas aqu&iacute; y descriptas concuerdan con  las reportadas previamente en nuestro pa&iacute;s (16); sin embargo, se  reporta el hallazgo de nuevos genotipos (por ejemplo, HAdV-B3), la detecci&oacute;n de  cepas puras teniendo en cuenta las tres regiones analizadas (P1H1F1,  P2H2F2, P6H6F6, P16H16F16) y la  confirmaci&oacute;n de cepas recombinantes intra-g&eacute;nicos (P49H9/15F15) e inter-g&eacute;nicos  (P1H2F2, P1H5F1, entre  otros).</font></p>      <p align="left"><font size="2" face="Verdana">Las asignaciones de genotipos fueron provisorias, ya  que se analizaron secuencias parciales de cada gen; en el gen hexon, por  ejemplo, se amplific&oacute; la porci&oacute;n terminal de la regi&oacute;n C4, caracterizada por  ser altamente conservada en todos los adenovirus; en la especie C, &eacute;sta regi&oacute;n  es indistinguible entre los prototipos por la alta similitud entre ellas y por presentar  en ella eventos de recombinaci&oacute;n. De esta forma, el prototipo HAdV-C6 contiene  un fragmento HAdV-C2 en &eacute;sta regi&oacute;n (C6/C2) &nbsp;(24). Para establecer un genotipo  definitivo a las muestras, se deber&aacute; secuenciar otras regiones del gen hexon  como los bucles 1 y 2, que presentan variabilidad para distinguir un genotipo  de otro (25).</font></p>      <p align="left"><font size="2" face="Verdana">Algunos genes de HAdV fueron agrupados en una posici&oacute;n  intermedia entre dos genotipos distintos (ej. para el gen penton de la especie  C, entre genotipos HAdV-C1 y HAdV-C6). Sin embargo, fueron descartados como  recombinantes, teniendo en cuenta las regiones analizadas. En estos casos, para  confirmar/descartar recombinaci&oacute;n, se deber&aacute; amplificar el gen penton completo.  Otros reportes ya han demostrado la ocurrencia de recombinaci&oacute;n en el penton de  otras especies, ocasionando un cambio del tropismo celular (15).</font></p>      <p align="left"><font size="2" face="Verdana">En cuanto a los recombinantes inter-g&eacute;nicos, se observaron varios ejemplos, tales como P1H2F2, o P1H5F1.  No se descarta la probabilidad de que estos sean  genomas completamente nuevos, ya que la recombinaci&oacute;n dentro de la especie C es  m&aacute;s com&uacute;n de lo que se pensaba, ejemplo de ello es el recombinante HAdV-C57  (P1H57F6) (24,26).</font></p>      <p align="left"><font size="2" face="Verdana">Los primeros an&aacute;lisis de Py52A indicaron que se  trataba de un recombinante inter-g&eacute;nico conteniendo el penton del genotipo  HAdV-D49 y el hexon y fibra del genotipo HAdV-D15 (P49H15F15). La idea de  encontrar el punto de quiebre entre el genotipo -D49 y el -D15 en el gen hexon,  nos llev&oacute; a amplificar la mayor parte de este gen. Los an&aacute;lisis realizados nos  indicaron que se trataba de un genoma con m&uacute;ltiples eventos de recombinaci&oacute;n  con al menos tres genotipos: (i) gen penton del genotipo -D49; (ii) gen hexon quim&eacute;rico,  con genotipos -D9 y -D15; (iii) gen fibra del genotipo &ndash;D15. Por lo tanto, el  aislado Py52A cuyo genotipo se design&oacute; finalmente como P49H9F15, ser&iacute;a un nuevo  genotipo de HAdV.</font></p>      <p align="left"><font size="2" face="Verdana">En  el Paraguay, este trabajo es el segundo en abordar la diversidad gen&eacute;tica de  HAdV y el primero en demostrar la naturaleza recombinante de cepas aisladas de  ni&ntilde;os menores de 5 a&ntilde;os con IRAb. Adem&aacute;s, demuestra la importancia de seguir  profundizando en la epidemiolog&iacute;a molecular de adenovirus en el pa&iacute;s, debido a  que en cualquier momento podr&iacute;a surgir una cepa recombinante altamente  patog&eacute;nica de importancia en salud p&uacute;blica.</font></p>      <p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="left"><font size="3" face="Verdana"><b>REFERENCIAS</b></font></p>      <!-- ref --><p align="left"><font size="2" face="Verdana">1. Benko M, Harrach B, Russell WC. Family adenoviridae. In: van Regenmortel  HV, Ed.&nbsp; Virus taxonomy: seventh report  of the International Committee on Taxonomy of Viruses. San Diego: Academic  Press; 2000. p. 227-38.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=118342&pid=S1683-9803201600020000300001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="left"><font size="2" face="Verdana">2. Rux JJ, Burnett RM. Adenovirus structure. Hum Gene Ther.  2004;15(12):1167-76.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=118344&pid=S1683-9803201600020000300002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="left"><font size="2" face="Verdana">3. Lynch JP, Fishbein M, Echavarria M. Adenovirus. Semin Respir Crit Care  Med. 2011;32(4):494-511.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=118346&pid=S1683-9803201600020000300003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="left"><font size="2" face="Verdana">4. Robinson CM, Zhou X, Rajaiya J, Yousuf MA, Singh G, DeSerres JJ, Walsh  MP, Wong S, Seto D, Dyer DW, Chodosh J, Jones MS. Predicting the next eye  pathogen: analysis of a novel adenovirus. MBio. 2013;4(2):e00595-12.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=118348&pid=S1683-9803201600020000300004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="left"><font size="2" face="Verdana">5. Matsushima Y, Shimizu H, Kano A, Nakajima E, Ishimaru Y, Dey SK, Watanabe  Y, Adachi F, Mitani K, Fujimoto T, Phan TG, Ushijima H. Genome sequence of a  novel virus of the species human adenovirus d associated with acute  gastroenteritis. Genome Announc. 2013;1(1): e00068-12.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=118350&pid=S1683-9803201600020000300005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="left"><font size="2" face="Verdana">6. Hierholzer JC, Stone YO, Broderson JR. Antigenic relationships among the  47 human adenoviruses determined in reference horse antisera. Arch Virol.  1991;121(1-4):179-97.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=118352&pid=S1683-9803201600020000300006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="left"><font size="2" face="Verdana">7. De Jong JC, Wermenbol AG, Verweij-Uijterwaal MW, Slaterus KW,  Wertheim-Van Dillen P, Van Doornum GJ, Khoo SH, Hierholzer JC. Adenoviruses  from human immunodeficiency virus-infected individuals, including two strains  that represent new candidate serotypes Ad50 and Ad51 of species B1 and D,  respectively. J Clin Microbiol. 1999;37(12):3940-5.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=118354&pid=S1683-9803201600020000300007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="left"><font size="2" face="Verdana">8. Kajon AE, Moseley JM, Metzgar D, Huong HS, Wadleigh A, Ryan MA, Russell  KL. Molecular epidemiology of adenovirus type 4 infections in US military  recruits in the postvaccination era (1997-2003). J Infect Dis.  2007;196(1):67-75.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=118356&pid=S1683-9803201600020000300008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="left"><font size="2" face="Verdana">9. Madisch I, Harste G, Pommer H, Heim A. Phylogenetic analysis of the main  neutralization and hemagglutination determinants of all human adenovirus  prototypes as a basis for molecular classification and taxonomy. J Virol.  2005;79(24):15265-76.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=118358&pid=S1683-9803201600020000300009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="left"><font size="2" face="Verdana">10. Ginsberg HS, Pereira HG, Valentine RC, Wilcox WC. A proposed  terminology for the adenovirus antigens and virion morphological subunits.  Virology. 1966;28(4):782-3.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=118360&pid=S1683-9803201600020000300010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="left"><font size="2" face="Verdana">11. Zubieta C, Schoehn G, Chroboczek J, Cusack S. The structure of the  human adenovirus 2 penton. Mol Cell. 2005;17(1):121-35.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=118362&pid=S1683-9803201600020000300011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="left"><font size="2" face="Verdana">12. Wu E, Pache L, Von Seggern DJ, Mullen TM, Mikyas Y, Stewart PL, Nemerow  GR. Flexibility of the adenovirus fiber is required for efficient receptor  interaction. J Virol. 2003;77(13):7225-35.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=118364&pid=S1683-9803201600020000300012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="left"><font size="2" face="Verdana">13. Walsh MP, Chintakuntlawar A, Robinson CM, Madisch I, Harrach B, Hudson  NR, Schnurr D, Heim A, Chodosh J, Seto D, Jones MS. Evidence of molecular  evolution driven by recombination events influencing tropism in a novel human  adenovirus that causes epidemic keratoconjunctivitis. PLoS One.  2009;4(6):e5635.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=118366&pid=S1683-9803201600020000300013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="left"><font size="2" face="Verdana">14. Robinson CM, Singh G, Lee JY, Dehghan S, Rajaiya J, Liu EB, Yousuf MA,  Betensky RA, Jones MS, Dyer DW, Seto D, Chodosh J. Molecular evolution of human  adenoviruses. Sci Rep. 2013;3:1812.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=118368&pid=S1683-9803201600020000300014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="left"><font size="2" face="Verdana">15. Robinson CM, Rajaiya J, Walsh MP, Seto D, Dyer DW, Jones MS, Chodosh J.  Computational analysis of human adenovirus type 22 provides evidence for  recombination among species D human adenoviruses in the penton base gene. J  Virol. 2009;83(17):8980-5.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=118370&pid=S1683-9803201600020000300015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="left"><font size="2" face="Verdana">16. Espinola EE, Russomando G, Basualdo W, Ben&iacute;tez DA, Meza G, Maldonado L,  Paranhos-Baccal&agrave; G. Genetic diversity of human adenovirus in hospitalized  children with severe acute lower respiratory infections in Paraguay. J Clin  Virol. 2012;53(4):367-69.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=118372&pid=S1683-9803201600020000300016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="left"><font size="2" face="Verdana">17. Saitoh-Inagawa W, Oshima A, Aoki K, Isobe K, Uchio E, Ohno S, Nakajima  H, Hata K, Ishiko H. Rapid diagnosis of adenoviral conjunctivitis by PCR and  restriction fragment length polymorphism analysis. J Clin Microbiol.  1996;34(9):2113-6.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=118374&pid=S1683-9803201600020000300017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="left"><font size="2" face="Verdana">18. Madisch I, Hofmayer S, Moritz C, Grintzalis A, Hainmueller J,  Pring-Akerblom P, Heim A. Phylogenetic analysis and structural predictions of  human adenovirus penton proteins as a basis for tissue-specific adenovirus  vector design. J Virol. 2007;81(15):8270-81.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=118376&pid=S1683-9803201600020000300018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="left"><font size="2" face="Verdana">19. Hall TA. BioEdit: a user-friendly biological sequence alignment editor  and analysis program for windows 95/98/NT. Nucleic Acids Symposium Series.  1999;41:95-98.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=118378&pid=S1683-9803201600020000300019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="left"><font size="2" face="Verdana">20. Thompson JD, Higgins DG, Gibson TJ. CLUSTAL W: improving the  sensitivity of progressive multiple sequence alignment through sequence  weighting, position-specific gap penalties and weight matrix choice. Nucleic  Acids Res. 1994;22(22):4673-80.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=118380&pid=S1683-9803201600020000300020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="left"><font size="2" face="Verdana">21. Tamura K, Peterson D, Peterson N, Stecher G, Nei M, Kumar S. MEGA5:  molecular evolutionary genetics analysis using maximum likelihood, evolutionary  distance, and maximum parsimony methods. Mol Biol Evol. 2011;28(10):2731-9.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=118382&pid=S1683-9803201600020000300021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="left"><font size="2" face="Verdana">22. Lole KS, Bollinger RC, Paranjape RS, Gadkari D, Kulkarni SS, Novak NG,  Ingersoll R, Sheppard HW, Ray SC. Full-length human immunodeficiency virus type  1 genomes from subtype C-infected seroconverters in India, with evidence of  intersubtype recombination. J Virol. 1999;73(1):152-60.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=118384&pid=S1683-9803201600020000300022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="left"><font size="2" face="Verdana">23. Liu EB, Ferreyra L, Fischer SL, Pavan JV, Nates SV, Hudson NR, Tirado  D, Dyer DW, Chodosh J, Seto D, Jones MS. Genetic analysis of a novel human  adenovirus with a serologically unique hexon and a recombinant fiber gene. PLoS  One. 2011;6(9):e24491.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=118386&pid=S1683-9803201600020000300023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="left"><font size="2" face="Verdana">24. Walsh MP, Seto J, Liu EB, Dehghan S, Hudson NR, Lukashev AN, Ivanova O,  Chodosh J, Dyer DW, Jones MS, Seto D. Computational analysis of two species C  human adenoviruses provides evidence of a novel virus. J Clin Microbiol.  2011;49(10):3482-90.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=118388&pid=S1683-9803201600020000300024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="left"><font size="2" face="Verdana">25. Gall JG, Crystal RG, Falck-Pedersen E. Construction and  characterization of hexon-chimeric adenoviruses: specification of adenovirus  serotype. J Virol. 1998;72(12):10260-4.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=118390&pid=S1683-9803201600020000300025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>      <!-- ref --><p align="left"><font size="2" face="Verdana">26. Lukashev AN, Ivanova OE, Eremeeva TP, Iggo RD. Evidence of frequent  recombination among human adenoviruses. J Gen Virol. 2008;89(Pt 2):380-8.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=118392&pid=S1683-9803201600020000300026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font>     ]]></body>
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